Actividades formativas de Doctorado de la Universidad de Cádiz
 
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CULTIVOS CELULARES Y TISULARES EN BIOMEDICINA. PRINCIPIOS DE INGENIERÍA TISULAR

Organiza: Programa de Doctorado de CC. de la Salud

Inscripción en: https://posgrado.uca.es/doctor
(en este momento no hay plazo abierto para inscripción en este curso)

Coordinación:
Dra. Dª. MERCEDES SALIDO PERACAULA
Plazas ofertadas por grupo: 6
Duración: 25 horas (16 h. presenciales)
Modalidad: Mixta (Presencial + virtual)    Idioma: Español

Lugar de impartición: Facultad de Medicina
Campus de Cádiz
Precio de matrícula de este curso: 41.5 euros


Destinatarios
Doctorandos CC Salud y Programas afines


Descripción general

Curso presencial con contenido teorico y práctico impartido en horario de mañana y tarde. El principal objetivo del curso es introducir al estudiante en la teoría y práctica de las técnicas de cultivos celulares y la biología de las células en cultivo así como en la ingeniería tisular y su importancia para el desarrollo de terapias avanzadas en el tratamiento de enfermedades congénitas o adquiridas. 



Objetivos
  • Introducir al estudiante de Doctorado en la teoría y en la práctica de las técnicas de cultivos celulares, así como en la biología de las células en cultivo.
  • Transmitir al estudiante la importancia de los cultivos celulares como herramienta de investigación para reducir la experimentación animal innecesaria, su aplicación en la producción de fármacos y su importancia para el estudio de las aplicaciones médicas de la regulación celular.
  • Introducir al estudiante en la disciplina emergente de la Ingeniería Tisular y su importancia para el desarrollo de terapias avanzadas en el tratamiento de enfermedades congénitas o adquiridas.
  • Proporcionar al estudiante suficiente información para realizar por sí mismo las técnicas básicas de cultivos que pueda requerir en su proyecto de investigación 


Contenidos

BLOQUE 1. NIVEL A: CONOCIMIENTOS BÁSICOS

 

1.     Introducción a los cultivos celulares: historia, concepto, ventajas y desventajas

2.     Biología de la célula en cultivo

3.     Normas básicas para el diseño de un laboratorio de cultivos

4.     Equipamiento

5.     Seguridad y riesgos biológicos. Técnicas de asepsia

6.     Técnicas básicas de cultivo. Tipos de cultivo

7.     Valoración de la viabilidad celular, proliferación celular y citotoxicidad.

8.     Criopreservación

9.     Contaminación

 

BLOQUE 2. NIVEL B: CONOCIMIENTOS ESPECÍFICOS

 

10.  Cultivos primarios

11.  Cultivo de líneas establecidas

12.  Cultivos organotípicos e histotípicos

13.  Mantenimiento del cultivo

14.  Separación y caracterización celular

15.  Inducción de diferenciación celular

16.  Protocolos específicos de cultivos: ejemplos de líneas tumorales y líneas normales

BLOQUE 3. NIVEL C: APLICACIÓN DE CONOCIMIENTOS DE INGENIERIA TISULAR EN MEDICINA

 

17.  Ingeniería Tisular en biomedicina

 

18.  Creación de tejidos. Constructos orgánicos

 

19.  Maduración de constructos orgánicos

 

20.   Biomateriales: diseño e importancia funcional

 

Control de calidad



Competencias básicas y capacidades

Que el estudiante adquiera conocimientos sobre la biología de la célula en cultivo, diseño del laboratorio y equipamiento.

·  Que el estudiante adquiera conocimientos sobre cultivos primarios, cultivo de líneas establecidas y cultivos organotípicos e histotípicos

·  Que el estudiante adquiera conocimientos sobre seguridad y riesgos biológicos en el laboratorio de cultivos

·  Que el estudiante adquiera conocimientos sobre caracterización y diferenciación celular y protocolos específicos de cultivos:

·  Que el estudiante adquiera conocimientos sobre técnicas especiales aplicables a los cultivos (Microscopía confocal, microscopía electrónica y analítica)

·  Que el estudiante adquiera conocimientos sobre biomateriales y constructos orgánicos

·   Que el estudiante adquiera conocimientos sobre control de calidad

·  Que el estudiante integre los conceptos de biocompatibilidad, interacción célula-soporte y adhesión celular.   



Metodología

Entrega de material didáctico en soporte informático. Asimismo el material estará disponible en el Campus Virtual a través del cual los alumnos plantearan, en un foro, las cuestiones o aclaraciones que estimen pertinentes en el tiempo de trabajo personal. Asimismo contestarán a las preguntas que se les planteen una vez terminado cada bloque temático.

- Clases presenciales interactivas

- Trabajo de laboratorio en grupos reducidos tutelados (máx 2 alumnos) en la Unidad de Cultivos Celulares y Microscopía Confocal así como en el Servicio Centralizado de Microscopía electrónica de la UCA.

- Exposición, a modo de comunicación oral en inglés, de la bibliografía trabajada por el alumno para su discusión en panel profesores-alumnos que recogerá una síntesis de la misma y conclusiones.

- Conferencias profesores invitados, a las que se aplicará la misma metodología docente.

- El alumno aprenderá bases de lectura y escritura, en inglés, para la presentación de resultados de investigación y el intercambio de sus experiencias con otros investigadores con especial insistencia en la redacción de su proyecto de investigación.

- Encuesta a los alumnos que muestre grado de satisfacción y recoja las sugerencias para la implementación de la calidad del curso.

 

- Discusión y conclusiones en panel de las sugerencias de los alumnos para la posible modificación del temario y la metodología docente en cursos siguientes, identificándose fortalezas y debilidades para plantear las oportunas propuestas de mejora. 



Selección de estudiantes

 

 



Sistema de evaluación

-          Criterios de evaluación:

Se evaluará: asistencia, exposición por parte del alumno y análisis de material bibliográfico complementario entregado al estudiante y completado por éste (45%). Evaluación del grado de competencia y desarrollo de habilidades teóricas y prácticas adquiridas a través de los diseños experimentales y experimentos desarrollados por los estudiantes. (45%) Contestación a las preguntas que se les planteen una vez terminado cada bloque temático y participación en el foro (10%).



Bibliografía

Bibliografía básica curso

Palsson B, Hubbel JA, Plonsey R, Bronzino JD, eds. Tissue Engineering. Principles and applications in engineering series. CRC Press. Boca Ratón. Florida, 2003

Lanza R ed. Handbook of stem cells. Elsevier. Amsterdam, 2004.

Freshney I, ed. Culture of cells for tissue engineering. Wiley Intersciences. NY, 2006

 

Rakesh S, ed. Apoptosis, cell signalling and human diseases. Vol I. Vol II. Humana Press. Totowa NJ, USA 2006

Trabajos de referencia del grupo de investigación

Osteoblasts Interaction with PLGA Membranes Functionalized with Titanium Film Nanolayer by PECVD. In vitro Assessment of Surface Influence on Cell Adhesion during Initial Cell to Material Interaction. Materials 2014, 7, 1687-1708

 

Terriza A, Díaz-Cuenca A, Yubero F, Barranco A, Gonzalez-Elipe AR, Gonzalez Caballero JL, Vilches J,Salido M. Light induced hydrophilicity and osteoblast adhesion promotion on amorphous TiO2. J Biomed Mater Res Part A   2013 Apr;101(4):1026-35

 

M Salido, JI Vilches, JL Gonzalez, J Vilches. Implant surface microtopography induces mitochondrial bioenergetics and distribution in living human osteoblasts. Histol.Histopathol 2009 , 24: 1275-1286.

 

Sevillano N, Girón MD, Salido M, Vargas AM, Vilches J, Salto R. Internalization of The Receptor for Advanced Glycation end Products (Rage) is Required to Mediate Intracellular Responses.J Biochem. 2009 Jan;145(1):21-30

 

M.Salido, J.I. Vilches, J.L. Gutiérrez, J. Vilches. Actin cytoskeletal organization in human osteoblasts grown on different dental titanium implant surfaces. Histol. Histopathol. 2007, 22: 1355-1364.

 

Salido M, Gonzalez JL, Vilches J. Loss of mitochondrial membrane potential is inhibited by bombesin in etoposide-induced apoptosis in PC3 prostate carcinoma cells. Molecular Cancer Therapeutics, 2007, 6(4):1292-9).

 

Neuropeptides, Apoptosis and Ion changes in Prostate Cancer. Methods of study and recent developments. Vilches J,Salido M, Fernández-Segura E, Roomans GM.Histol. Histopathol.2004: 19: 951-961.

 

M Salido, JI Vilches, J Vilches. Simultaneous fluorescence and reflection confocal microscopy study of living osteoblast bioenergetics as a tool for the design of surface topography of dental implants. In: Dental Material Research. Nova Science Publishers, NY. 2009 (In: Kaminski HD and DuPois EA. Editors.  Dental Material Research. Nova Science Publishers. New York, 2009.  ISBN: 978-1-60741-104-8

 

Vilches J and Salido M. Neuropeptides as Modulators of Apoptosis in Prostate Cancer. En Zhang ChW. Trends in Cell Apoptosis Research. Nova Science Publishers Inc. Hauppauge, NY. pp 111-150, 2007

 

Vilches J, Salido M. Cell-surface interaction in biomedical implants asessed by simultaneous fluorescence and reflection confocal microscopy. In: Méndez-Vilas A,  Díaz J: Modern Research and Educational Topics in Microscopy. Formatex . Spain. 2007. . pp 60-67, 2007.

 

 

Revistas especializadas

Apoptosis. ISSN: 1360-8185 

Tissue Engineering. ISSN: 1076-3279 

Biomaterials. ISSN: 0142-9612 

Histology and Histopathology. ISSN: 0213-3911  



Programación - Edición 1 (01-02-2016 a 05-02-2016)
02-02-2016 a 05-02-2016 10-14.30h SCICS ( Laboratorio Grupo Inv Unidad de Cultivos Celulares)

Mercedes Salido Peracaula

Sesiones Prácticas 

01-01-2016 a 05-01-2016 16:00-19:00 Facultad de Medicina

Mercedes Salido Peracaula

José Vilches Troya

Profesor Invitado

Docencia Teórica