El conocimiento del mar pasa necesariamente por la aplicación de una metodología que permita conocer el material hereditario de los seres vivos (ADN) y su expresión (ARN y proteínas). Este estudio debe llevarse a cabo a nivel molecular, cromosómico  y celular.  Además hay que analizarlo tanto a nivel individual, en  cada organismo en el que se estudie,  como  a nivel poblacional.  También debe considerarse la interacción entre organismos, que condicionan en gran medida el destino de las especies acuáticas, tanto en cultivo como en el medio natural. Esta interacción es especialmente relevante cuando hay patógenos implicados.
Por otra parte, el rápido desarrollo de nuevas metodologías y su demostrada utilidad en acuicultura, recursos pesqueros y organismos marinos en general, justifica  la propuesta de este curso en el que se utilizarán como organismos modelo dos especies emblemáticas en acuicultura: dorada y lenguado. Sobre ellas se irán aplicando diversas técnicas de acuerdo con el programa del curso.

- Técnicas de obtención, caracterización y secuenciación de ADN cromosómico y plasmídico: bases moleculares teóricas y actividad práctica.
- Principales marcadores moleculares y técnicas para identificación. Aplicaciones en procariotas y eucariotas.
- Trazabilidad alimentaria. Sesión práctica de identificación mediante secuenciación y analisis in silico de muestras problemas.
- Análisis de fragmentos (microsatélites) mediante PCR multiplex.
- Genotipado y asignación de parentesco.
- Localización de genes utilizando clones BAC (bacterial artificial chromosomes) mediante FISH (fluoresecence in situ hybridization) simple, doble y múltiple: teoría y práctica.
- Mapas genéticos integrados mediante la utilización de BACs y cromosomas aislados por microdisección láser.
- La RT-qPCR: Conceptos generales.
- Optimización de la RT-qPCR: Primers, temperatura de anillamiento, formación de dímeros, Eficiencia de la reacción.
- Prácticas: desarrollo de recta de calibrado, cálculo de la eficiencia de la amplificación  y cuantificación de distintas muestras.
- Análisis funcional de cDNA mediante transfección transitoria. Metodología de la transfección química. Uso de genes reporteros: EGFP y DsRed. Teoría y práctica.
-Técnicas inmunocitoquímicas y de hibridación in situ: bases teóricas.
- Localización mediante técnicas de inmunofluorescencia de células neurosecretoras en el cerebro y la hipófisis de peces: marcajes simples y dobles marcajes. Observación al microscopio de fluorescencia: actividad práctica.
- Microdisección láser de células inmunomarcadas: actividad práctica.

- Adquirir habilidad para el trabajo en laboratorio de biología molecular
- Aprender las bases teóricas y la metodología de obtención de ADN, clonación, secuenciación y caracterización bioinformática de secuencias
- Familiarizarse con el análisis de microsatélites para análisis de parentesco
 - Conocer las principales técnicas moleculares de identificación de especies tanto en procariotas y en eucariotas.
 - Identificar los principales metodologías en trazabilidad alimentaria y de poblaciones
- Conocer los fundamentos de citogenética molecular aplicados a la localización cromosómica de genes y realización de mapas genéticos
- Aprender a realizar e interpretar mapas genéticos integrados
- Conocer la metodología de la transfección química transitoria, así como el análisis y caracterización de los transformantes
- Aprender el uso la técnica de la RT-qPCR para el análisis de la expresión génica y su utilización en el análisis de los datos obtenidos de la RT-qPCR
- Conocer los fundamentos teóricos de las técnicas morfofuncionales para detectar péptidos y ARN mensajeros en secciones de tejidos biológicos, y  desarrollar destrezas prácticas en el uso de técnicas inmunohistoquímicas.

- Clases magistrales.

- Prácticas en laboratorio.

- Control de asistencia.

- Exámen tipo test.