El objetivo del curso es dotar a todos los alumnos de los conocimientos y destrezas que le permitan abordar diseños de experimentos  mediante el uso de la citometría de flujo, además de analizar e interpretar los datos que genera está técnica.

Lunes 23 Abril

09:00-10.30 Fluorescencia y espectros.

10:30-11:00 Descanso

11:00-12:00 Fundamentos de la citometría de flujo. Sistema de fluidos, sistema óptico y sistema electrónico.

12:00-13:00 Parámetros medidos por citometría de flujo. Fluoróforos. Ajuste de detectores, solapamiento de fluorescencia y compensación. Panel de muestras.

13:00-14:00 Aplicaciones de la citometría de flujo. ¿Cómo preparar las muestras dependiendo de su origen?

14:00-15:00 Descanso

15:00-17:00 Práctica. Detección de poblaciones homogéneas y heterogéneas mediante citometría de flujo. 

Martes 24 Abril

9:00-10:30 Elección del fluoróforo. Marcaje celular: Marcaje directo e indirecto. Marcaje de membrana, marcaje intracelular, marcaje intranuclear.

10:30-11:00 Descanso

11:00-12:00 Titulación de un fluoróforo  y anticuerpos. Inmunofenotipaje.

12:00-14:00 Análisis de ciclo celular mediante citometría de flujo. Análisis de proliferación. Problemas del análisis del DNA por citometría de flujo.

14:00-15:00 Descanso

15:00-17:00 Práctica: Análisis de Viabilidad celular y especies reactivas del oxígeno.

Miércoles 25 Abril

9:00-10:30 Apoptosis vs. Necrosis

10:30-11:00 Descanso

11:00-14:00 Práctica potencial de membrana y ensayo capacidad fagocítica.

14:00-15:00 Descanso

15:00-17:00 Práctica de análisis de datos e interpretación de resultados.

Se proporcionara durente el desarrollo del curso.